↑ Вверх ↓ Вниз

Фиксатором, наиболее часто применяемым при приготовлении препаратов для световой микроскопии, является (ответ на вопрос)

ФИКСАТОРОМ, НАИБОЛЕЕ ЧАСТО ПРИМЕНЯЕМЫМ ПРИ ПРИГОТОВЛЕНИИ ПРЕПАРАТОВ ДЛЯ СВЕТОВОЙ МИКРОСКОПИИ, ЯВЛЯЕТСЯ
1) жидкость Ценкера
2) этиловый спирт 70%
3) формалин 10% (+)
4) этиловый спирт 96 %

10% нейтральный забуференный формалин является наиболее распространённым фиксатором для препаратов, предназначенных для световой микроскопии. Он представляет собой водный раствор формальдегида с рабочей концентрацией около 4%. Формальдегид образует метиленовые мостики между белковыми молекулами, стабилизируя тканевые структуры, подавляя аутолиз и препятствуя посмертному бактериальному разложению.

Преимуществами формалина являются хорошее сохранение общей архитектоники органов, совместимость с рутинной парафиновой проводкой и большинством гистологических окрасок, доступность и возможность фиксации относительно крупных фрагментов. Оптимальным считается соотношение объёма фиксатора и ткани не менее 10:1; толщина фрагмента обычно не должна превышать 4–5 мм. Недостаточная фиксация вызывает аутолитические изменения и неравномерное окрашивание, а чрезмерно продолжительное пребывание в формалине может маскировать антигенные детерминанты, что необходимо учитывать при иммуногистохимическом исследовании.

ФиксаторМеханизм действияОсновное применениеОграничения
10% нейтральный забуференный формалинОбразование поперечных связей между белкамиРутинная гистология, парафиновые срезы, большинство окрасокМожет снижать иммунореактивность и повреждать нуклеиновые кислоты при длительной фиксации
70% этиловый спиртКоагуляция и дегидратация белковЦитологические препараты, отдельные гистохимические методыВызывает сморщивание и уплотнение тканей
96% этиловый спиртБыстрая выраженная коагуляция белковФиксация мазков, сохранение некоторых растворимых компонентовРезкая дегидратация и значительная деформация тканевой структуры
Жидкость ЦенкераКомбинированная фиксация солями ртути и бихроматамиИсторически применялась для кроветворной ткани и тонкой цитологической детализацииТоксичность, ртутный пигмент, сложная утилизация
ГлутаральдегидИнтенсивное поперечное связывание белковПреимущественно электронная микроскопияМедленно проникает в ткань, менее удобен для рутинной световой микроскопии
Жидкость БуэнаСочетание пикриновой кислоты, формальдегида и уксусной кислотыБиопсии органов репродуктивной системы, эмбриональные тканиВызывает жёлтое окрашивание ткани и ограничивает молекулярные исследования

Качество фиксации непосредственно определяет достоверность морфологической диагностики, поскольку артефакты могут имитировать дистрофию, некроз или клеточную атипию. Перед помещением материала в формалин крупные операционные препараты необходимо рассекать для равномерного проникновения раствора. Для большинства биопсий оптимальная продолжительность фиксации составляет примерно 6–24 часа, однако конкретный режим зависит от размеров и типа ткани. При планировании иммуногистохимических и молекулярно-генетических исследований время холодовой ишемии и длительность фиксации должны строго контролироваться.

Поделитесь с коллегами ссылкой на наш сайт