2) иммуноферментного анализа
3) бактериологического посева, повторяемый через 2-3 дня
4) полимеразной цепной реакции (+)
Правильный ответ — полимеразная цепная реакция (ПЦР). Метод выявляет специфические фрагменты ДНК Bordetella pertussis непосредственно в клиническом материале, поэтому позволяет подтвердить инфекцию ещё в катаральном периоде и в начале приступообразного кашля, когда клиническая картина может быть стёртой или атипичной. Высокая аналитическая чувствительность ПЦР особенно важна при малом количестве возбудителя, в том числе у привитых пациентов и при лёгком течении заболевания.
Для исследования используют мазок или аспират из носоглотки; материал следует брать до начала антибактериальной терапии или как можно раньше после её начала. ПЦР не требует сохранения жизнеспособности бактерий и даёт результат в течение короткого времени, что выгодно отличает её от культурального метода. При интерпретации необходимо учитывать сроки заболевания, качество забора материала и применение валидированных тест-систем, поскольку выявление ДНК должно соответствовать клиническим данным.
Бактериологический посев остаётся специфичным методом, но его чувствительность снижается с увеличением длительности кашля и после приёма антибиотиков, а получение результата занимает несколько суток. Иммуноферментный анализ определяет антитела, поэтому более информативен на поздних сроках заболевания и не является оптимальным способом раннего подтверждения. Прямая иммунофлюоресценция мазков может давать неспецифические результаты и уступает ПЦР по диагностической точности.
| Метод | Что выявляет | Оптимальные сроки | Диагностическая характеристика |
|---|---|---|---|
| ПЦР | ДНК B. pertussis | От начала кашля до 3–4-й недели, особенно рано | Быстрый и чувствительный метод ранней диагностики; результат зависит от правильного забора носоглоточного материала |
| Бактериологический посев | Живую культуру возбудителя | Первые 2 недели кашля, до антибиотикотерапии | Высокая специфичность, но меньшая чувствительность и длительное получение результата; необходимы специальные питательные среды |
| ИФА | Специфические антитела, чаще IgG к коклюшному токсину | Обычно со 2–3-й недели заболевания и позднее | Полезен при позднем обращении; ранний отрицательный результат не исключает коклюш |
| Иммунофлюоресцентная микроскопия | Антигены возбудителя в мазке | Ранний период, при достаточном количестве бактерий | Быстрый, но менее специфичный и чувствительный метод; не заменяет ПЦР и посев |
| Клиническая оценка | Катаральные явления, приступы кашля, репризы, рвота после кашля | На протяжении всего заболевания | Позволяет заподозрить коклюш, но при атипичных и стёртых формах требует лабораторного подтверждения |
| Материал для ПЦР | Мазок или аспират из носоглотки | До антибиотиков или в первые дни лечения | Мазок из зева менее информативен, поскольку основная локализация возбудителя связана с реснитчатым эпителием носоглотки |
Положительный результат ПЦР подтверждает наличие генетического материала возбудителя, но должен оцениваться с учётом клинической картины и эпидемиологического анамнеза. Отрицательный результат не исключает коклюш при позднем взятии материала, некачественном мазке или уже проведённой антибиотикотерапии. При поздних сроках болезни диагностическую ценность приобретает серологическое исследование, а в ранние сроки приоритет сохраняет ПЦР.