↑ Вверх ↓ Вниз

Диагностику хромосомной транслокации в интерфазных ядрах клеток костного мозга при хроническом миелоидном лейкозе целесообразно проводить с использованием (ответ на вопрос)

ДИАГНОСТИКУ ХРОМОСОМНОЙ ТРАНСЛОКАЦИИ В ИНТЕРФАЗНЫХ ЯДРАХ КЛЕТОК КОСТНОГО МОЗГА ПРИ ХРОНИЧЕСКОМ МИЕЛОИДНОМ ЛЕЙКОЗЕ ЦЕЛЕСООБРАЗНО ПРОВОДИТЬ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ
1) уникальных ДНК-зондов на субтеломерные последовательности длинных плеч хромосом 9 и 22, меченных одним флуоресцентным красителем
2) уникальных локус-специфичных ДНК-зондов на последовательности генов BCR и ABL, меченных одним флуоресцентным красителем
3) уникальных локус-специфичных ДНК-зондов на последовательности генов BCR и ABL, меченных разными флуорохромами (+)
4) центромеро-специфичных ДНК-зондов на хромосомы 9 и 14/22, меченных разными флуорохромами

Для выявления транслокации t(9;22)(q34.1;q11.2), формирующей химерный ген BCR::ABL1, в интерфазных ядрах применяют двухцветные локус-специфичные ДНК-зонды, комплементарные участкам генов BCR и ABL1. Каждый ген маркируется своим флуорофором, поэтому при сближении и слиянии соответствующих участков на дериватной хромосоме возникает совмещённый (fusion) сигнал. Такой вариант FISH позволяет исследовать клетки без получения метафазных пластинок и быстро установить наличие клона с BCR::ABL1.

Химерный ген кодирует конститутивно активную тирозинкиназу BCR::ABL1, которая запускает сигнальные пути пролиферации и подавляет апоптоз миелоидных клеток; это молекулярная основа хронического миелоидного лейкоза. При классическом паттерне двухцветной двухфузионной FISH в ядре выявляют два сигнала слияния, соответствующие реципрокным продуктам транслокации, и по одному раздельному сигналу каждого цвета. Вариант с одинаковой меткой для обоих локусов не позволяет надёжно отличить их совместную локализацию, а центромерные или субтеломерные зонды не подтверждают непосредственно перестройку генов BCR и ABL1.

ПодходМишеньИнформативный результатДиагностическое значение
Двухцветная двухфузионная FISHЛокус-специфичные участки BCR и ABL1Совмещённые сигналы двух цветовПрямое выявление перестройки BCR::ABL1 в интерфазных ядрах
Типичный FISH-паттерн при t(9;22)Два флуорофора, специфичных для BCR и ABL1Обычно 2 fusion-, 1 красный и 1 зелёный сигналПоддерживает наличие классической реципрокной транслокации
Нормальный клеточный клонДва раздельных локуса BCR и два раздельных локуса ABL1Раздельные сигналы без патологического слиянияТранслокация t(9;22) не выявлена данным методом
Одноцветные зонды к BCR и ABL1Те же локусы, но одинаковая флуоресцентная меткаНевозможно достоверно различить происхождение и колокализацию сигналовНедостаточная специфичность для двухцветного fusion-анализа
Центромерные зондыЦентромеры хромосом 9, 14 или 22Изменение числа или расположения центромерных сигналовОценивают числовые аномалии, но не подтверждают BCR::ABL1
Субтеломерные зондыТеломерные участки длинных плеч хромосомНеспецифическое сближение или изменение сигналовМогут указывать на перестройку, но не идентифицируют генную мишень
Количественная ОТ-ПЦРТранскрипт BCR::ABL1 в РНКОпределение уровня транскриптаОсновной метод молекулярного мониторинга ответа на терапию ингибиторами тирозинкиназы

FISH особенно полезна при исследовании интерфазных клеток, когда цитогенетический анализ метафаз ограничен низкой митотической активностью или недостаточным качеством препарата. Отрицательный результат FISH не исключает редкие криптические или атипичные варианты перестройки, поэтому при сохраняющемся клиническом подозрении применяют ОТ-ПЦР или секвенирование. Для подтверждения диагноза и последующего наблюдения важно также определить тип транскрипта BCR::ABL1 и его количественный уровень. Ответ на терапию оценивают преимущественно по динамике молекулярной нагрузки, а не только по факту наличия транслокации.

Поделитесь с коллегами ссылкой на наш сайт