↑ Вверх ↓ Вниз

Диагностику стабильных хромосомных транслокаций при лучевом поражении рекомендуется проводить с использованием (ответ на вопрос)

ДИАГНОСТИКУ СТАБИЛЬНЫХ ХРОМОСОМНЫХ ТРАНСЛОКАЦИЙ ПРИ ЛУЧЕВОМ ПОРАЖЕНИИ РЕКОМЕНДУЕТСЯ ПРОВОДИТЬ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ
1) mFISH на метафазных хромосомах (+)
2) FISH c хромосомо-специфичными ДНК-зондами на хромосомы группы G
3) анализа дифференциально G-окрашенных метафазных хромосом
4) анализа рутинно окрашенных метафазных хромосом

Многоцветная FISH (mFISH) на метафазных хромосомах позволяет одновременно визуализировать все хромосомы с использованием наборов флуоресцентно меченых ДНК-зондов. Каждая хромосома приобретает индивидуальный цветовой профиль, благодаря чему выявляются реципрокные и сложные транслокации, включая обмены между несколькими хромосомами. Такой подход особенно информативен при биологической дозиметрии после радиационного воздействия, когда необходимо установить факт и примерный уровень облучения по частоте стабильных аберраций.

Стабильные транслокации сохраняются в клеточных потомках и могут обнаруживаться спустя длительное время после облучения, в отличие от дицентрических хромосом и ацентрических фрагментов, которые чаще элиминируются при клеточных делениях. Исследование метафазных клеток обеспечивает анализ структурных перестроек на уровне отдельных хромосом и позволяет учитывать сложные радиационно-индуцированные аберрации. Поэтому именно mFISH является наиболее подходящим методом для чувствительного и объективного выявления стабильных хромосомных транслокаций.

Ограниченная FISH с зондами к отдельным хромосомам выявляет только перестройки с участием выбранных мишеней и может пропустить транслокации между другими хромосомами. Дифференциальное G-окрашивание и рутинная окраска зависят от качества метафаз и разрешающей способности метода, хуже распознают небольшие или сложные перестройки и менее пригодны для массовой количественной оценки радиационного поражения.

МетодОсновной диагностический признакВозможности при радиационном пораженииОграничения
mFISH на метафазных хромосомахИндивидуальная многоцветная маркировка хромосом и выявление обменов между нимиОбнаружение стабильных реципрокных и сложных транслокаций, пригодность для ретроспективной биологической дозиметрииВысокая стоимость, необходимость специального оборудования и анализа метафаз
FISH с хромосомо-специфичными зондамиФлуоресцентная маркировка одной или нескольких выбранных хромосомЦеленаправленное выявление перестроек с участием определённых хромосомНе позволяет полноценно оценить транслокации с участием немаркированных хромосом
G-окрашивание метафазЧередующийся рисунок тёмных и светлых полос хромосомМорфологическая оценка крупных структурных перестроек и числовых аномалийНизкая чувствительность к малым, сложным и криптическим транслокациям
Рутинная окраска метафазОбщая морфология и число хромосом без специфической идентификации участковОриентировочная оценка грубых хромосомных нарушенийНедостаточная точность для установления партнёров транслокации
Дицентрический анализВыявление хромосом с двумя центромерами и ацентрических фрагментовЧувствительный метод ранней биологической дозиметрии после острого облученияАберрации нестабильны и уменьшаются при пролиферации клеток, поэтому метод ограничен по времени
Стабильная транслокацияСохранение обмена участками хромосом при последующих клеточных деленияхПозволяет оценивать отдалённые последствия и перенесённое облучениеНе всегда указывает точное время воздействия и может встречаться спонтанно с низкой частотой

Результат mFISH оценивают по частоте клеток со стабильными транслокациями и другим окрашиваемым перестройкам. Для интерпретации учитывают возраст, фоновые спонтанные аберрации, вид излучения и предполагаемую дозу. Наиболее надёжная оценка проводится по достаточному числу метафаз с применением стандартизированных протоколов подсчёта. Метод также может использоваться для мониторинга отдалённых цитогенетических последствий радиационного воздействия.

Поделитесь с коллегами ссылкой на наш сайт