↑ Вверх ↓ Вниз

Концентрация ионов магния mg2+ в смеси для полимеразной цепной реакции влияет на (ответ на вопрос)

КОНЦЕНТРАЦИЯ ИОНОВ МАГНИЯ Mg2+ В СМЕСИ ДЛЯ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ ВЛИЯЕТ НА
1) невозможность прохождения реакции вследствие нарушения ионной силы раствора
2) снижение эффективности и увеличение специфичности реакции
3) увеличение эффективности и снижение специфичности реакции (+)
4) снижение температуры плавления продукта реакции

Ионы Mg2+ являются обязательным кофактором ДНК-полимеразы. Они координируют фосфатные группы дезоксинуклеозидтрифосфатов и участвуют в формировании активного комплекса полимераза–матрица–праймер , обеспечивая присоединение нуклеотидов к растущей цепи. Поэтому недостаток магния ограничивает каталитическую активность фермента и снижает выход ампликона.

При увеличении концентрации Mg2+ до оптимального уровня эффективность ПЦР возрастает. Одновременно избыток катионов экранирует отрицательный заряд ДНК и стабилизирует не только полностью комплементарные, но и частично комплементарные дуплексы. Это облегчает неспецифическое отжигание праймеров, образование побочных ампликонов и праймер-димеров, то есть снижает специфичность реакции. Таким образом, отмеченный вариант отражает типичный эффект повышения концентрации Mg2+ в рабочем диапазоне: увеличение эффективности при уменьшении специфичности.

Концентрация магния также влияет на стабильность двухцепочечных участков и фактически изменяет условия отжига праймеров, однако это не означает простого самостоятельного снижения температуры плавления продукта. Оптимальное значение подбирают экспериментально с учётом последовательности праймеров, содержания GC, концентрации дНТФ, типа полимеразы и состава буфера. Для оценки результата используют выход целевого ампликона, наличие неспецифических полос при электрофорезе, а в количественной ПЦР — эффективность амплификации и форму кривой плавления.

Уровень Mg2+ относительно оптимумаМолекулярный эффектРезультат ПЦРТипичный лабораторный признак
НедостаточныйНеполная стабилизация комплекса полимераза–ДНК и слабое связывание дНТФСнижение эффективности или отсутствие амплификацииСлабая либо отсутствующая полоса целевого продукта
ОптимальныйСбалансированная активность полимеразы и стабильность праймер-матрицаВысокий выход целевого ампликона при хорошей специфичностиОдна ожидаемая полоса или один пик плавления
ПовышенныйУсиление экранирования отрицательного заряда ДНК и стабилизация несовершенных дуплексовУвеличение выхода, но снижение специфичностиДополнительные полосы, побочные пики, праймер-димеры
Резко повышенныйИзбыточная стабилизация неспецифических взаимодействий и нарушение оптимального баланса компонентовНеспецифическая амплификация, иногда снижение качества реакцииМазок на электрофореграмме или множественные пики плавления
Высокое содержание GC в мишениТребуется более эффективное разрушение стабильных вторичных структур; влияние Mg зависит от состава буфераОптимум Mg может отличаться от стандартногоНеравномерная амплификация или низкий выход без дополнительной оптимизации
ПЦР в реальном времениИзменение Mg влияет на скорость накопления продукта и соотношение специфической и неспецифической амплификацииМеняются эффективность реакции и достоверность количественной оценкиСдвиг Ct, изменение эффективности и появление дополнительных пиков на кривой плавления

Оптимальную концентрацию Mg2+ обычно устанавливают серией параллельных реакций с градиентом MgCl2. Изменять её следует одновременно с контролем температуры отжига и концентраций праймеров, поскольку эти параметры взаимосвязаны. В мультиплексной ПЦР особенно важно выбрать компромисс между выходом нескольких мишеней и подавлением неспецифических продуктов. Для диагностических исследований обязательны отрицательный контроль, положительный контроль и проверка специфичности полученного ампликона.

Поделитесь с коллегами ссылкой на наш сайт